Przejdź do sekcji głównej Przejdź do głównego menu Przejdź do stopki
  • Zarejestruj
  • Zaloguj
  • Język
    • Čeština
    • Deutsch
    • English
    • Español (España)
    • Français (France)
    • Français (Canada)
    • Hrvatski
    • Italiano
    • Język Polski
    • Srpski
    • Українська
  • Menu
  • Strona domowa
  • Aktualny numer
  • Archiwum
  • O czasopiśmie
    • O czasopiśmie
    • Przesyłanie tekstów
    • Zespół redakcyjny
    • Polityka prywatności
    • Kontakt
  • Zarejestruj
  • Zaloguj
  • Język:
  • Čeština
  • Deutsch
  • English
  • Español (España)
  • Français (France)
  • Français (Canada)
  • Hrvatski
  • Italiano
  • Język Polski
  • Srpski
  • Українська

HERBALISM

Wpływ hesperydyny na rozwój stresu oksydacyjnego w sercu szczurów z cukrzycą typu 1
  • Strona domowa
  • /
  • Wpływ hesperydyny na rozwój stresu oksydacyjnego w sercu szczurów z cukrzycą typu 1
  1. Strona domowa /
  2. Archiwum /
  3. Tom 9 Nr 1 (2023): HERBALISM /
  4. Artykuły

Wpływ hesperydyny na rozwój stresu oksydacyjnego w sercu szczurów z cukrzycą typu 1

Autor

  • Piotr Bramora Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach https://orcid.org/0000-0002-9235-3174
  • Maria Zych Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach https://orcid.org/0000-0002-7231-0505
  • Weronika Borymska Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach https://orcid.org/0000-0002-3013-7564
  • Ilona Kaczmarczyk-Żebrowska Śląski Uniwersytet Medyczny w Katowicach https://orcid.org/0000-0002-3137-1694

DOI:

https://doi.org/10.12775/HERB.2023.004

Słowa kluczowe

cukrzyca typu 1, hesperydyna, stres oksydacyjny, serce

Abstrakt

W przebiegu cukrzycy obserwuje się hiperglikemię, która jest jedną z przyczyn rozwoju stresu oksydacyjnego uszkadzającego różne tkanki i narządy organizmu, w tym serce. Suplementacja związków pochodzenia roślinnego o właściwościach antyoksydacyjnych może być skuteczną metodą zapobiegania powstawaniu stresu oksydacyjnego. W niniejszym badaniu określono rolę flawonoidu hesperydyny na parametry stresu oksydacyjnego w tkance serca w przebiegu cukrzycy typu 1. W tym celu hesperydynę w dawkach 50 i 100 mg/kg podawano per os przez 28 dni samcom szczurów szczepu Wistar, u których wywołano cukrzycę poprzez
wstrzyknięcie dootrzewnowe streptozotocyny. U gryzoni z cukrzycą wykazano wzrost aktywności katalazy, peroksydazy glutationowej oraz zawartości aldehydu dimalonowego w sercu. Zastosowanie hesperydyny w obu dawkach spowodowało
spadek aktywności dysmutazy ponadtlenkowej, zmniejszenie zawartości aldehydu dimalonowego, natomiast efektem wyższej dawki flawonoidu było także obniżenie całkowitego statusu oksydacyjnego połączone ze wzrostem całkowitej odpowiedzi
antyoksydacyjnej. Można stwierdzić, że hesperydyna łagodzi zaburzenia równowagi oksydoredukcyjnej w tkance serca w przebiegu cukrzycy typu 1.

Bibliografia

Saeedi P., Petersohn I., Salpea P., Malanda B., Karuranga S., Unwin N., Colagiuri S., Guariguata L., Motala A.A., Ogurtsova K., Shaw J.E., Bright D., Williams R., Global and regional diabetes prevalence estimates for 2019 and projections for 2030 and 2045: Results from the International Diabetes Federation Diabetes Atlas, 9 th edition, Diabetes Research and Clinical Practice, 2019, 157, s. 107843.

Harreiter J., Roden M., Diabetes Mellitus-Definition, classification, diagnosis, screening and prevention, Wiener Klinische Wochenschrift, 2019, 131(Suppl. 1), s. 6–15.

Van der Wall E.E., Asymptomatic diabetes: screening by routine imaging beneficial?, Netherlands Heart Journal, 2015, 23(2), s. 79–81.

Hansen S.S., Aasum E., Hafstad A.D., The role of NADPH oxidases in diabetic cardiomyopathy, Biochimica et Biophysica Acta – Molecular Basis of Disease, 2017, 1864, s. 1908–1913.

Huynh K., Bernardo B.C., McMullen J.R., Ritchie R.H., Diabetic cardiomyopathy: Mechanisms and new treatment strategies targeting antioxidant signaling pathways, Pharmacology & Therapeutics, 2014, 142, s. 375–415.

Kayama Y., Raaz U., Jagger A., Adam M., Schellinger I.N., Sakamoto M., Suzuki H., Toyama K., Spin J.M., Tsao P.S., Diabetic cardiovascular disease induced by oxidative stress, International Journal of Molecular Sciences, 2015, 16, s. 25234–25263.

Accord Study Group, Nine-Year Effects of 3.7 Years of Intensive Glycemic Control on Cardiovascular Outcomes, Diabetes Care, 2016, 39(5), s. 701–708.

Gilbert R.E., Krum H., Heart failure in diabetes: effects of anti-hyperglycaemic drug therapy, Lancet, 2015, 385(9982), s. 2107–2117.

Wang H.X., Ng T.B., Natural products with hypoglycemic, hypotensive, hypocholesterolemic, antiatherosclerotic and antithrombotic activities, Life Science, 1999, 65, s. 2663–2677.

Li Ch., Schluesener H., Health-promoting effects of the citrus flavanone hesperidin, Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2017, 57(3), s. 613–631.

Agrawal Y.O., Sharma P.K., Shrivastava B., Ojha S., Upadhya H.M., Arya D.S., Goyal S.N., Hesperidin produces cardioprotective activity via PPAR-γ pathway in ischemic heart disease model in diabetic rats, PLOS One, 2014, 9, s. e111212.

Agrawal Y.O., Sharma P.K., Shrivastava B., Arya D.S., Goyal S.N., Hesperidin blunts streptozotocin-isoproternol induced myocardial toxicity in rats by altering of PPAR-γ receptor, Chemico-Biological Interactions, 2014, 219, s. 211–220.

Galati E.M., Trovato A., Kirjavainen S., Forestieri A.M., Rossitto A., Monforte M.T., Biological effects of hesperidin, a citrus flavonoid. (Note III): antihypertensive and diuretic activity in rat, Farmaco, 1996, 51, s. 219–221.

Ikemura M., Sasaki Y., Giddings J.C., Yamamoto J., Preventive effects of hesperidin, glucosyl hesperidin and naringin on hypertension and cerebral thrombosis in stroke-prone spontaneously hypertensive rats, Phytotherapy Research, 2012, 26(9), s. 1272–1277.

Ganeshpurkar A., Saluja A., The pharmacological potential of hesperidin, Indian Journal of Biochemistry & Biophysics, 2019, 56, s. 287–300.

Kumar B., Gupta S.K., Srinivasan B.P., Nag T.C., Srivastava S., Saxena R., Hesperetin ameliorates hyperglycemia induced retinal vasculopathy via anti-angiogenic effects in experimental diabetic rats, Vascular Pharmacology, 2012, 57, s. 201–207.

Jin Y.R., Han X.H., Zhang Y.H., Lee J.J., Lim Y., Chung J.H., Yun Y.P., Antiplatelet activity of hesperetin, a bioflavonoid, is mainly mediated by inhibition of PLC-gamma2 phosphorylation and cyclooxygenase-1 activity, Atherosclerosis, 2007, 194(1), s. 144–152.

Yang Z., Liu Y., Deng W., Dai J., Li F., Yuan Y., Wu Q., Zhou H., Bian Z., Tang Q., Hesperetin attenuates mitochondria-dependent apoptosis in lipopolysaccharide-induced H9C2 cardiomyocytes, Molecular Medicine Reports, 2014, 9(5), s. 1941–1946.

Trivedi P.P., Kushwaha S., Tripathi D.N., Jena G.B., Cardioprotective effects of hesperetin against doxorubicin-induced oxidative stress and DNA damage in rat, Cardiovascular Toxicology, 2011, 11(3), s. 215–225.

Hanchang W., Khamchan A., Wongmanee N., Seedadee C., Hesperidin ameliorates pancreatic β-cell dysfunction and apoptosis in streptozotocin-induced diabetic rat model, Life Sciences, 2019, 235, s. 116858.

Furman B.L., Streptozotocin-Induced Diabetic Models in Mice and Rats, Current Protocols in Pharmacology, 2015, 70, s. 1–20.

Goyal S.N., Reddy N.M., Patil K.R., Nakhate K.T., Ojha S., Patil C.R., Agrawal Y.O., Challenges and issues with streptozotocin-induced diabetes – A clinically relevant animal model to understand the diabetes pathogenesis and evaluate therapeutics, Chemico-Biological Interactions, 2016, 244, s. 49–63.

Qinna N.A., Badwan A.A., Impact of streptozotocin on altering normal glucose homeostasis during insulin testing in diabetic rats compared to normoglycemic rats, Drug Design, Development and Therapy, 2015, 9, s. 2515–2525.

Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.I., Randall R.J., Protein measurement with the Folin phenol reagent, Journal of Biological Chemistry, 1951, 193, s. 265–275.

Buege J.A., Aust S.D., Microsomal lipid peroxidation, Methods in Enzymology, 1978, 52, s. 302–310.

Witko-Sarsat V., Friedlander M., Capeillère-Blandin C., Nguyen-Khoa T., Nguyen A.T., Zingraff J., Jungers P., Descamps-Latscha B., Advanced oxidation protein products as a novel marker of oxidative stress in uremia, Kidney International, 1996, 49,

s. 1304–1313.

Jagota S.K., Dani H.M., A new colorimetric technique for the estimation of vitamin C using Folin phenol reagent, Analytical Biochemistry, 1982, 127, s. 178–182.

Erel O., A new automated colorimetric method for measuring total oxidant status, Clinical Biochemistry, 2005, 38, s. 1103–1111.

Erel O., A novel automated method to measure total antioxidant response against potent free radical reactions, Clinical Biochemistry, 2004, 37, s. 112–119.

Bramora P., Borymska W., Zych M., Kaczmarczyk-Sedlak I., Effect of naringenin on oxidative stress in the heart tissue of type 1 diabetic Wistar rats, Acta Poloniae Pharmaceutica – Drug Research, 2021, 78(5), s. 693–703.

Mutavdzin S., Gopcevic K., Stankovic S., Jakovljevic Uzelac J., Labudovic Borovic M., Djuric D., The Effects of Folic Acid Administration on Cardiac Oxidative Stress and Cardiovascular Biomarkers in Diabetic Rats, Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2019, s. 1342549.

Li C.L., Liu B., Wang Z.Y., Xie F., Qiao W., Cheng J., Kuang J.Y., Wang Y., Zhang M.X., Liu D.S., Salvianolic acid B improves myocardial function in diabetic cardiomyopathy by suppressing IGFBP3, Journal of Molecular and Cellular Cardiology, 2020, 139, s. 98–112.

Ali T.M., Abo-Salem O.M., El Esawy B.H., El Askary A., The Potential Protective Effects of Diosmin on Streptozotocin-Induced Diabetic Cardiomyopathy in Rats, The American Journal of the Medical Sciences, 2020, 359(1), s. 32–41.

Talebi A.R., Mangoli E., Nahangi H., Anvari M., Pourentezari M., Halvaei I., Vitamin C attenuates detrimental effects of diabetes mellitus on sperm parameters, chromatin quality and rate of apoptosis in mice, European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology, 2014, 181, s. 32–36.

Sun Y., Zhou S., Guo H., Protective effects of sulforaphane on type 2 diabetes-induced cardiomyopathy via AMPK-mediated activation of lipid metabolic pathways and NRF2 function, Metabolism, 2020, 102, s. 154002.

American Diabetes Association, 9. Pharmacologic Approaches to Glycemic Treatment: Standards of Medical Care in Diabetes-2019, Diabetes Care, 2019, 42(Suppl. 1), s. 90–102.

Larsson S.C., Wallin A., Håkansson N., Stackelberg O., Bäck M., Wolk A., Type 1 and type 2 diabetes mellitus and incidence of seven cardiovascular diseases, International Journal of Cardiology, 2018, 262, s. 66–70.

Rani N., Bharti S., Bhatia J., Nag T.C., Ray R., Arya D.S., Chrysin, a PPAR-γ agonist improves myocardial injury in diabetic rats through inhibiting AGE-RAGE mediated oxidative stress and inflammation, Chemico-Biological Interactions, 2016, 250, s. 59–67.

Sharma I., Aaradhya M., Kodikonda M., Naik P.R., Antihyperglycemic, antihyperlipidemic and antioxidant activity of phenolic rich extract of Brassica oleraceae var gongylodes on streptozotocin induced Wistar rats, SpringerPlus, 2015, 4, s. 212.

Bhatti R., Sharma S., Singh J., Ishar M.P., Ameliorative effect of Aegle marmelos leaf extract on early stage alloxan-induced diabetic cardiomyopathy in rats, Pharmaceutical Biology, 2011, 49(11), s. 1137–1143.

Aju B.Y., Rajalakshmi R., Mini S., Protective role of Moringa oleifera leaf extract on cardiac antioxidant status and lipid peroxidation in streptozotocin induced diabetic rats, Heliyon, 2019, 5(12), s. e02935.

Al-Numair K.S., Chandramohan G., Veeramani C., Alsaif M.A., Ameliorative effect of kaempferol, a flavonoid, on oxidative stress in streptozotocin-induced diabetic rats, Redox Report, 2015, 20(5), s. 198–209.

Rezaeyan A., Haddadi G.H., Hosseinzadeh M., Moradi M., Najafi M., Radioprotective effects of hesperidin on oxidative damages and histopathological changes induced by X-irradiation in rats heart tissue, Journal of Medical Physics, 2016, 41(3), s. 182–191.

Zhang N., Yang Z., Xiang S.Z., Jin Y.G., Wei W.Y., Bian Z.Y., Deng W., Tang Q.Z., Nobiletin attenuates cardiac dysfunction, oxidative stress, and inflammatory in streptozotocin: induced diabetic cardiomyopathy, Molecular and Cellular Biochemistry, 2016, 417(1–2), s. 87–96.

Bao H., Chen L.I., Icariin reduces mitochondrial oxidative stress injury in diabetic rat hearts, China Journal of Chinese Materia Medica, 2011, 36(11), s. 1503–1507.

Hayes J.P., Jenkins S.H., Individual Variation in Mammals, Journal of Mammalogy, 1997, 78(2), s. 274–293.

Jones D.P., Redox potential of GSH/GSSG couple: assay and biological significance, Methods in Enzymology, 2002, 348, s. 93–112.

Zhang Y.F., Meng N.N., Li H.Z., Wen Y.J., Liu J.T., Zhang C.L., Yuan X.H., Jin X.D., Effect of naringin on oxidative stress and endoplasmic reticulum stress in diabetic cardiomyopathy, China Journal of Chinese Materia Medica, 2018, 43(3), s. 596–602.

Soetikno V., Sari F.R., Sukumaran V., Lakshmanan A.P., Mito S., Harima M., Thandavarayan R.A., Suzuki K., Nagata M., Takagi R., Watanabe K., Curcumin prevents diabetic cardiomyopathy in streptozotocin-induced diabetic rats: possible involvement of PKC-

-MAPK signaling pathway, European Journal of Pharmaceutical Sciences, 2012, 47(3), s. 604–614.

Ibrahim S.S., Protective Effect of Hesperidin, a Citrus Bioflavonoid, on Diabetes-Induced Brain Damage in Rats, Journal of Applied Sciences Research, 2008, 4(1), s. 84–95.

Hazman Ö., Serhat O., Investigation of the anti-inflammatory effects of safranal on high-fat diet and multiple low-dose streptozotocin induced type 2 diabetes rat model, Inflammation, 2015, 38(3), s. 1012–1019.

Turhan U., Yilmaz E., Gul M., Melekoglu R., Turkoz Y., Ozyalin F., Parlakpinar H., Simsek Y., Investigation of the effect of gestational diabetes on fetal cardiac tissue in streptozotocin induced in rats, Acta Cirúrgica Brasileira, 2018, 33(4), s. 306–313.

Aslan M., Sabuncu T., Kocyigit A., Celik H., Selek S., Relationship between total oxidant status and severity of diabetic nephropathy in type 2 diabetic patients, Nutrition, Metabolism & Cardiovascular Diseases, 2007, 17(10), s. 734–740.

Dokumacioglu E., Iskender H., Musmul A., Effect of hesperidin treatment on α-Klotho/ FGF-23 pathway in rats with experimentally induced diabetes, Biomedicine & Pharmacotherapy, 2019, 109, s. 1206–1210.

HERBALISM

Pobrania

  • PDF

Sklep wydawnictwa:

Przejdź do sklepu

Opublikowane

2023-06-16

Jak cytować

1.
BRAMORA, Piotr, ZYCH, Maria, BORYMSKA, Weronika & KACZMARCZYK-ŻEBROWSKA, Ilona. Wpływ hesperydyny na rozwój stresu oksydacyjnego w sercu szczurów z cukrzycą typu 1. HERBALISM [online]. 16 czerwiec 2023, T. 9, nr 1, s. 50–66. [udostępniono 26.12.2025]. DOI 10.12775/HERB.2023.004.
  • PN-ISO 690 (Polski)
  • ACM
  • ACS
  • APA
  • ABNT
  • Chicago
  • Harvard
  • IEEE
  • MLA
  • Turabian
  • Vancouver
Pobierz cytowania
  • Endnote/Zotero/Mendeley (RIS)
  • BibTeX

Numer

Tom 9 Nr 1 (2023): HERBALISM

Dział

Artykuły

Licencja

Creative Commons License

Utwór dostępny jest na licencji Creative Commons Uznanie autorstwa – Bez utworów zależnych 4.0 Międzynarodowe.

Statystyki

Liczba wyświetleń i pobrań: 567
Liczba cytowań: 0

Wyszukiwanie

Wyszukiwanie

Przeglądaj

  • Indeks autorów
  • Lista archiwalnych numerów

Użytkownik

Użytkownik

Aktualny numer

  • Logo Atom
  • Logo RSS2
  • Logo RSS1

Informacje

  • dla czytelników
  • dla autorów
  • dla bibliotekarzy

Newsletter

Zapisz się Wypisz się

Język / Language

  • Čeština
  • Deutsch
  • English
  • Español (España)
  • Français (France)
  • Français (Canada)
  • Hrvatski
  • Italiano
  • Język Polski
  • Srpski
  • Українська

Tagi

Szukaj przy pomocy tagu:

cukrzyca typu 1, hesperydyna, stres oksydacyjny, serce
W górę

Akademicka Platforma Czasopism

Najlepsze czasopisma naukowe i akademickie w jednym miejscu

apcz.umk.pl

Partnerzy platformy czasopism

  • Akademia Ignatianum w Krakowie
  • Akademickie Towarzystwo Andragogiczne
  • Fundacja Copernicus na rzecz Rozwoju Badań Naukowych
  • Instytut Historii im. Tadeusza Manteuffla Polskiej Akademii Nauk
  • Instytut Kultur Śródziemnomorskich i Orientalnych PAN
  • Instytut Tomistyczny
  • Karmelitański Instytut Duchowości w Krakowie
  • Ministerstwo Kultury i Dziedzictwa Narodowego
  • Państwowa Akademia Nauk Stosowanych w Krośnie
  • Państwowa Akademia Nauk Stosowanych we Włocławku
  • Państwowa Wyższa Szkoła Zawodowa im. Stanisława Pigonia w Krośnie
  • Polska Fundacja Przemysłu Kosmicznego
  • Polskie Towarzystwo Ekonomiczne
  • Polskie Towarzystwo Ludoznawcze
  • Towarzystwo Miłośników Torunia
  • Towarzystwo Naukowe w Toruniu
  • Uniwersytet im. Adama Mickiewicza w Poznaniu
  • Uniwersytet Komisji Edukacji Narodowej w Krakowie
  • Uniwersytet Mikołaja Kopernika
  • Uniwersytet w Białymstoku
  • Uniwersytet Warszawski
  • Wojewódzka Biblioteka Publiczna - Książnica Kopernikańska
  • Wyższe Seminarium Duchowne w Pelplinie / Wydawnictwo Diecezjalne „Bernardinum" w Pelplinie

© 2021- Uniwersytet Mikołaja Kopernika w Toruniu Deklaracja dostępności Sklep wydawnictwa